石蜡切片如何快速操作完成？
（一）应用范围
（1）替代冷冻切片，在没有条件制作冷冻切片的单位，用作术中诊断；
（2）快速诊断：适用于门诊外地患者，1天可取报告。
（二）切片制作
（1） 将送检的各类组织按《规范》（一）编号登记、眼观、描述记录后，用大头针和羊皮纸包好，投入配制好的固定液烧杯内5~10min(固定液配制：95％乙醉85ml，甲醛10ml，冰醋酸5ml)；若组织较厚，可在预固定后修薄，重复固定；
（2）无水乙醇、丙酮脱水3~5min；
（3）浸蜡5min；
（4）常规石蜡包埋，或封固于预制好的蜡块内；
（5）常规HE加温染色。
（三）注意事项
（1） 制作快速石蜡切片全过程过程均加温在65~72℃范围内操作，可用快速组织处理仪、或在恒温水浴锅或恒温箱内完成；
（2） 替代冷冻切片可随到即做，一般在30min内完成；若成批操作，则可根据标本的数量多少，酌情延长时间；
（3） 制作快速石蜡切片，操作人员必须经过一段时间的训练和摸索，在取得一定经验、技术较熟练能保证切片质量后，方可受理对外服务，以把好质量关
石蜡切片的制作方法？
肠道的石蜡切片的制作
（1） 取材：用锋利的刀切取罗非鱼的一小段前肠（据胃5cm左右位置的前肠），组织块的规格为 3～5mm×3～5mm×10～15mm。
（2） 固定：采用Bouin氏固定液装瓶固定，固定液用量一般为组织块体积的10～20倍。
（3） 冲洗：固定12～24h后，将材料自固定液中取出后，在70%酒精中换洗几次，可在酒精中加几滴氨水至洗去黄色为止。
（4） 脱水：70%酒精（1h）→80%酒精（1h）→90%酒精（1h）→95%酒精（1h）→无水乙醇Ⅰ（1h）→无水乙醇Ⅱ（1h）
（5） 透明：无水乙醇与二甲苯溶液（1:1）（1h）→二甲苯Ⅰ（1h）→二甲苯Ⅱ
（1h）
（6） 浸蜡：浸蜡的全过程应在恒温设备中进行，将恒温箱调至58℃。
二甲苯与石蜡混合液（1:1）（1h）→石蜡Ⅰ（1h）→石蜡Ⅱ（1h）
浸蜡必须彻底，否则组织内残留透明剂会造成切片过程的困难和影响切片
的质量。
（7） 包埋：在小纸盒内注入溶化的石蜡，将已浸蜡的组织块置入其内，使蜡块迅速冷却硬固，组织块在蜡块中可长期保存。
（8） 切片：包埋后的组织块经修整后，用切片机切成5~7μm的石蜡带。
（9） 粘片：将组织石蜡带在50摄氏度的温水中展片，然后用经1%HCl溶液处理干净的载玻片捞片，组织带即可粘在载玻片上。
（10） 烤片：将粘好的载玻片置于35℃左右的温箱中烤干，待2~3小时后，即可取下编号。
（11） 苏木精—伊红染色：将烤干的片进行染色。
①脱蜡：将烤干的切片放入二甲苯(I)10min→二甲苯(Ⅱ)10rain。
②复水：将脱蜡后的切片移入100％酒精5min→95％酒精5min→85％酒精5min→70％酒精5min→蒸馏水5min
③HE染色显示肠道黏膜上皮内淋巴细胞：将蒸馏水洗涤后的切片移入Harris苏木精液中，10min，使细胞核着色；用自来水洗去切片上残余染液；用1％的盐酸酒精分色3秒；用自来水浸洗3h，显微镜下观察，直到胞核蓝化为止；然后切片入曙红溶液中染色5min，使细胞质着色。经95％酒精与100％酒精脱水，二甲苯透明后，中性树胶封片。
④奥新兰一沙黄染色显示肠道内肥大细胞：切片常规脱蜡下行至蒸馏水→奥新兰一沙黄液染色15～20min→蒸馏水速洗，镜检→95％和100％酒精分色脱水1—2min→二甲苯透明→中性树胶封片。
⑤阿利新兰醋酸染色显示肠道内杯状细胞：切片经脱蜡下行入蒸馏水→阿利新兰醋酸染色10min→蒸馏水洗→1％高碘酸水液氧化5min→蒸馏水略洗一Schiff试剂染色（37℃恒温箱）30min→普通水洗3次→蒸馏水2min→Ehrlich苏木精染色5min→95％酒精和100％酒精脱水→二甲苯透明，中性树胶封片。
切片经脱蜡下行入水：二甲苯(30 min)一二甲苯(10 min)一无水乙醇(5 min)一无水乙醇(5 min)一
95％ 乙醇(5 min)一85％乙醇(5 min)一70％ 乙醇(5 min)一流水冲洗(20 min)。人Ehrlich苏木精染
色12 min，蒸馏水速洗。盐酸酒精分色，镜检控制时间。入伊红染色2 min，蒸馏水略洗。盐酸酒精分色，镜检控制时间。经95％酒精与无水酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶封片。
阿利新兰—番红复合染色液的方法称Scaba法
阿利新兰—番红分别染色的方法称Spicer法
请问眼球的石蜡切片和冰冻切片有什么区别？各有什么优缺点？
1．冰冻切片 是免疫组织化学染色中最常用的一种切片方法。其最突出的优点是能够较完好地保存多种抗原的免疫活性，尤其是细胞表面抗原更应采用冰冻切片。新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片。
冰冻时，组织中水份易形成冰晶，往往影响抗原定位。一般认为冰晶少而大时，影响较小，冰晶小而多时，对组织结构损害较大，在含水量较多的组织中上述现象更易发生。冰晶的大小与其生长速率成正比，而与成核率（形成速率）成反比，即冰晶形成的数量愈多则愈小，对组织结构影响愈严重。因此，应尽量降低冰晶的数量。Fish认为冰冻开始时，冰晶成核率较慢，以后逐渐增加，其临界温度为-33。C,从-30。C降至-43。C之间，成核率急剧增加达1018，然后再减慢。基于上述理论可采取以下措施减少冰晶的形成
2．石蜡切片 其优点是组织结构保存良好，在病理和回顾性研究中有较大的实用价值，能切连续薄片，组织结构清晰，抗原定位准确。用于免疫组化技术的石蜡切片制备与常规制片略有不同：①脱水、透明等过程应在4℃。C下进行，以尽量减少组织抗原的损失。②组织块大小应限于2cm×1.5cm×0.2cm，使组织充分脱水、透明、浸蜡。③浸蜡、包埋过程中，石蜡应保持在60℃以下，以溶点低的软蜡最好（即低温石蜡包埋）。
石蜡切片的优缺点
石蜡切片的优点,能得到比较薄的连续切片..缺点,操作比较繁琐,时间比较长..
石蜡切片与冷冻切片的区别是什么
简单的说,石蜡切片是标本要这固定后经脱水,浸蜡后才能用于切片,冷冻切片是直接把标本放在切片机上使它即刻冰冻,就可以切片了.再简单的说一种是要经过很多工序才能用于切片,一种是直接用于切片.
石蜡切片问题·
是一部分切碎,还是全部是粉末的,1)石蜡切片一般是7、8微米,如果组织能看清的话适当加厚一点会不会好一点,2)刀片一定要锋利,从一边用向另一边,3)切得什么茎秆,是不是茎杆表皮太硬,有没有进行软化4)还有可能100%酒精脱水或二甲苯中时间过长,材料太脆了,我能想到的只能这些了,希望有帮助
如何制作石蜡切片?
[1]请教丁老师如何制作皮肤的石蜡切片
一 皮肤组织标本制作及常用染色方法概述
皮肤组织标本常规以福尔马林固定，石蜡包埋，苏木素－伊红(Hematoxylin eosin HE)染色。皮肤组织的制片及染色技术与普通病理相同：标本固定－水洗－硬化、脱水－透明－包埋－切片－染色。但皮肤组织亦有其自身特点，如表皮细胞层次多，纤维及脂肪组织丰富，在取材及固定方面有其特殊性，制片及染色过程也应注意其特点，以提高制片质量。
二 取材
a取材要足够大，应包括一小部分正常组织，以便与病理组织对照，因许多皮肤病的典型病变在真皮深层或皮下组织，故还应包括皮下组织,
b多数情况下应选择充分发展的损害，早期损害常为非特异性，晚期损害的病变大都处于恢复或变性、坏死阶段，充分发展的损害容易找到典型病变而明确诊断，还应尽量选择损害的活动边缘部分，中央部分可能病变已趋向于消退而找不出典型病变。对于水疱性、脓疱性以及含有病原体的损害应取早期损害，否则，若发生继发性改变(如变性、再生或继发性感染)可能隐蔽了重要病变的组织形态，同时，很难辨别病变形成的过程,
c尽量避免切除腋窝或腹股沟等部位皮肤组织，因该处皮肤由于磨擦，搔抓等常有萎缩,
d如疑有血管性或血液性疾患，最好不要取下肢标本，因下肢常有血液停滞或其它肢端血管病，皮内可能有含铁血黄素沉着,
e对某些肿瘤，如角化棘皮瘤，Spitz痣等，应尽可能将肿瘤全部切除，若不能全部切除，则最好自肿瘤中心至边缘取一楔形标本，以供组织学检查。
三 固定
切下皮肤愈早固定愈好，夏天超过4小时，冬天超过24小时，标本体积就要收缩变形或发生自溶。常用固定液为10％中性福尔马林，其总体积应为组织块总体积的7～10倍，用10％福尔马林固定小块组织(1.5 cm×1.5 cm×0.2cm)数小时即可，时间稍长对制片影响不大，随着温度的增高可缩短固定时间，对固定时间过长的标本，可在制作切片时，用流水冲洗24小时，甚至48小时，以免影响染色效果。
四 脱水、包埋、切片及染色
皮肤组织常用酒精脱水、二甲苯透明、石蜡包埋，切片厚度一般为5μm～7μm，与普通病理切片操作程序相同。HE染色法方便、经济，结果稳定，95％以上的组织切片都可以在HE染色下作出诊断，是皮肤组织病理最常用的方法。
[2]http://www.pathology-home.com/html/pathology/20051207_1.asp
自己点进去看吧，太多了 复制不了
制作石蜡切片 一般需要那些耗材 详细一点 谢谢了
石蜡切片机、恒温蜡箱、载玻片、盖玻片;乙醚、无水乙醇、甲醛、冰醋酸、苦味酸、重铬酸钾、锇酸、正丁醇、二甲苯、石蜡、甘油、加拿大树胶
凡士林里面的“切片石蜡”是什么东西?
石蜡的用途是十分广泛的.将纸张浸入石蜡后就可制取有良好防水性能的各种蜡纸,可以用于食品、药品等包装、金属防锈和印刷业上;石蜡加入棉纱后,可使纺织品柔软、光滑而又有弹性;石蜡还可以制得洗涤剂、乳化剂、分散剂、增塑剂、润滑脂最等. 所以切片石蜡主要是指把石蜡切片弄碎,增加凡士林的润滑感
如何制作共聚焦显微镜的细胞切片
如何制作共聚焦显微镜的细胞切片
石蜡切片法 ：
石蜡切片法是以石蜡作包埋剂,用旋转切片机将材料切成薄片,经一系列处理制成永久制片的方法.在研究植物的细胞,组织,胚胎以及形态等方面石蜡切片法是最理想的制片方法.
石蜡切片法的一般流程为:取材→固定→抽气→洗涤→脱水→透明→浸蜡→包埋→修块→切片→粘片→染色→封片.
取材
用锋利的刀片切取新鲜的植物材料,选定适宜的材料,立即固定.
取材的注意事项如下:
(1)取材料要新鲜.动作要迅速,以免挤压损坏组织;取病理材料时,应设置对照材料.
(2)所取材料大小要适当:根和茎一般直径≤5mm,切取成5-10mm小段;叶片一般取过中脉处,切成2-5mm宽,5-8mm长.在切材料时,必须注意刀片与中轴成直角,两切面平行,否则制成的切片细胞是斜的. 雌,雄蕊一般不需分割.
(3)取材时间可根据切片要求有所区别.如:在进行植物发育的研究过程时,需要找到细胞分裂相,一般在晴天的早晨9:00-10:00时取材,此时植物细胞分裂活动较明显.
(4)取材不易过老,否则制片有难度(过老的材料须在滑走切片机上进行);对纵切的材料适当多取材,如根尖,茎尖等,因为切到材料正中的概率较低.
(二)固定
将已切好的材料尽快地浸入相当于材料10-15倍体积的固定液中.借助固定液的作用,使细胞的新陈代谢瞬时停止,并保持细胞或组织的形态构造及其内含物的状态不发生变化.从而达到使组织变硬从而便于切片,增强内含物的折光度,令细胞易于着色的目的,同时具有防腐作用.以新鲜配制固定液效果较好.固定的时间依材料的种类,性质,大小等而定.材料固定完毕,保存于加盖的容器内,贴上标签.
良好的固定剂,应是穿透力强,使细胞立刻致死,原生质全部凝固;不发生任何变形,增强折光率,并且不妨碍染色.
常用固定液:
简单固定液 以一种化学药品配制的固定液.